Что такое хромоскопия при гастроскопии?

Метод контрастирования использует два физических принципа: поверхностное натяжение и гравитационное осаждение. Наиболее часто используемым средством в клинической практике является индигокармин.

Его механизм заключается в том, что индигокармин не всасывается слизистой оболочкой желудочно-кишечного тракта и имеет относительно низкую вязкость. При распылении на поверхность слизистой оболочки краситель оседает в углубленных участках, таких как желудочные ямки, отверстия крипт и края язв, в то время как поверхность приподнятых поражений остается неокрашенной из-за поверхностного натяжения. Этот контраст между светом и тенью усиливает трехмерное восприятие поверхности слизистой оболочки, позволяя врачам четко наблюдать линию демаркации и поверхностную микроструктуру, или рисунок ямок. Это особенно полезно для очерчивания плоских поражений.

Его функция во многом похожа на нанесение контурных линий на топографическую карту. Нормальная слизистая оболочка желудка содержит множество мелких борозд и углублений. После распыления красителя он скапливается в этих бороздах и выделяет складки и рисунок поверхности желудка. Если область становится плоской или приподнятой, краситель не может прилипать так же, и врач может немедленно распознать, что текстура является аномальной. Этот метод в основном используется для определения степени и границ поражения.

Метод абсорбции основан на ионных каналах на клеточной мембране и пиноцитозе. К часто используемым средствам относятся метиленовый синий, толуидиновый синий и кристаллический фиолетовый.

Нормальные зрелые эпителиальные клетки слизистой оболочки сохраняют интактную абсорбционную функцию и способны поглощать краситель в цитоплазму, тем самым демонстрируя глубокое окрашивание при эндоскопии. В отличие от этого, диспластические или раковые клетки часто проявляют нарушенное или отсутствующее поглощение красителя из-за потери клеточной полярности и метаболических нарушений.

Этот метод обычно использует такие красители, как метиленовый синий. Принцип прост: нормальные клетки активны и способны «поглощать» краситель, поэтому они выглядят синими; больные клетки из-за аномального метаболизма или сниженной жизнеспособности поглощают мало или совсем не поглощают краситель.

Наблюдая за тем, какие области окрашены, а какие нет, врачи могут выявлять клетки, которые стали функционально неактивными или аномальными, что позволяет проводить более точную прицельную биопсию и повышать диагностическую ценность.

Реактивный метод основан на химических реакциях с образованием цвета между специфическими веществами и компонентами тканей. Наиболее представительным реагентом является раствор Люголя.

Нормальные клетки плоского эпителия пищевода богаты гликогеном. При воздействии раствора йода гликоген образует комплекс с йодом и дает характерное коричневое окрашивание. Напротив, клетки раннего рака пищевода и предраковых поражений имеют сниженный или отсутствующий синтез гликогена, поэтому они не дают такой цветовой реакции после окрашивания йодом, что приводит к появлению отчетливой неокрашенной области. Этот механизм не только помогает определить место биопсии, но и способствует оценке степени инфильтрации опухоли путем наблюдения за четкостью границ поражения. Кроме того, конго красный, как кислотно-основный индикатор, может отражать секрецию желудочной кислоты путем изменения цвета с красного на сине-черный и используется для оценки кислотообразующей функции слизистой оболочки желудка.

Наиболее типичным примером является раствор Люголя. Это очень полезный инструмент при исследовании пищевода. Нормальные клетки слизистой оболочки пищевода содержат большое количество гликогена, который служит запасом энергии, и они приобретают темно-коричневый цвет при воздействии йода. Однако раковые клетки на ранних стадиях быстро потребляют энергию и теряют гликоген, поэтому они не меняют цвет после окрашивания йодом и остаются желтовато-белыми.

Это похоже на использование реагента для определения pH: любой участок, который не меняет цвет, становится ключевой подозрительной зоной. Кроме того, существует другой краситель под названием конго красный, который можно использовать для оценки секреции желудочной кислоты путем изменения цвета с красного на черный, помогая определить, является ли функция слизистой оболочки желудка нормальной.

Метод флуоресценции попадает в область фотодинамической диагностики. Путем внутривенного введения или местного распыления экзогенных флуоресцентных агентов, таких как натрий флуоресцеин, выполняется визуализация на основе различий между нормальной тканью и пораженной тканью в сосудистой проницаемости и метаболической активности.

Опухолевая ткань обычно ассоциируется с неоваскуляризацией и неполными базальными мембранами, что приводит к увеличению утечки флуоресцеина и эмиссии сильных флуоресцентных сигналов при определенных длинах волн возбуждения. Этот метод значительно улучшает уровень обнаружения мелких раковых поражений и карциномы in situ, и особенно ценен в последующем мониторинге пищевода Барретта и атрофического гастрита.

Хотя хромоскопия улучшила диагностическую чувствительность, она относительно громоздка, трудоемка и сильно зависит от субъективных факторов. В настоящее время, с развитием технологий оптической визуализации, методы электронной хромоскопии, такие как узкополосная визуализация (NBI), визуализация в синем свете (BLI) и связанная цветовая визуализация (LCI), постепенно заменяют некоторые функции химического окрашивания. Изменяя длину волны света, эти технологии могут подчеркнуть микрососудистую архитектуру слизистой оболочки без необходимости распыления красителей, что позволяет проводить «неинвазивную» патологическую диагностику в реальном времени.

В клинической практике врачам необходимо оценивать природу поражения пациента и сопоставлять диагностические преимущества химического окрашивания с потенциальными рисками, такими как аллергия или повреждение ДНК, чтобы выбрать наиболее подходящую стратегию обследования.